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<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[Vigilância da leishmaniose visceral em localidades epidemiologicamente distintas em Juruti, um município minerário do Estado do Pará, Brasil]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Surveillance actions for human visceral leishmaniasis (HVL) were carried out in Juruti, a mining municipality in Pará State. A peri-urban (Santa Maria-SM) and a rural (Capiranga-CA) location were selected with or without HVL, respectively, for the execution of four biannual serologic inquiries (lysate ELISA) in canine populations (SM = 94, CA = 45) and three entomological surveys (CDC light traps, 18-6 h x4). Subsequently, the clinical status, as well as the infection by Leishmania, was investigated in 53 dogs (SM = 28; CA = 25) with parasitological (bone marrow/lymph, Giemsa), molecular (peripheral blood leukocytes, kDNA-PCR) and serological (ELISA) diagnoses assessing different antigens (lysate, K39, Hsp83 - screen test, ROC curve). Seroprevalence varied in SM (45; 40; 15; 15%) and in CA (22; 30; 8.5; 0%), presenting increasing average IgG rates in SM (320; 378; 951; 1866; p <0.05) despite the euthanasia of dogs after the second survey, and stable average IgG rates in CA (100; 159; 141; 0), where euthanasia was not conducted. The frequency rates of Lutzomyia longipalpis/Lutzomyia spp. differed in SM (279/296) and CA (4/6). Clinical and laboratory results were similar for dogs from SM and CA, respectively: infection (parasitological examination: 86 and 84%; kDNA-PCR: 100%), clinical status (asymptomatic: 43 and 56%; symptomatic: 57 and 44%), and specificity by ELISA (100%). On the other hand, sensitivity (lysate: 44 and 18%; Hsp83: 48 and 27%; K39: 48 and 41%) and IgG levels (&#8804; 6,400; &#8804; 200) varied, respectively. The profile of canine infection in localities with or without HVL transmission differed only in terms of the level/evolution of IgG, which makes the temporality of investigations necessary, especially in quiet and isolated areas that present a low vector density and where the euthanasia of dogs would become unnecessary. The best serological test was ELISA-K39.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Se realizaron actividades de vigilancia para la leishmaniasis visceral humana (LVH) en Juruti, un municipio minero en el Estado de Pará. Se seleccionaron zonas periurbanas (Santa María-SM) y rurales (Capiranga-CA), con y sin LVH respectivamente, para cuatro estudios serológicos semestrales (ELISA lisado) en la población canina (SM = 94, CA = 45) y tres encuestas entomológicas (trampas de luz CDC, 18-6hx4). Posteriormente, se investigó el estado clínico y la infección por Leishmania en 53 perros (SM = 28, CA = 25) con diagnóstico parasitológico (médula ósea o linfa, Giemsa), molecular (leucocitos de sangre perférica, kDNA-PCR) y serológico (ELISA), evaluando diferentes antígenos (Lysate, K39, Hsp83 - screen test, curva ROC). La seroprevalencia varió en SM (45; 40; 15; 15%) y CA (22; 30; 8.5; 0%), con media creciente de IgG en SM (320; 378; 951; 1866; p<0,05), a pesar de la eutanasia en los perros después de la segunda encuesta, y estable CA (100; 159, 141; 0), en que no hubo eutanasia. La frecuencia de Lutzomyia longipalpis/Lutzomyia spp difiere en SM (279/296) y CA (4/6). Los resultados clínicos y de laboratorio se asemejan para perros de SM y AC, respectivamente, respecto a la infección (parásitos: 86 y 84%, kDNA-PCR: 100%), situación clínica (asintomática: 43, 56%; sintomáticas: 57, 44%) y especificidad en ELISA (100%), pero se registró variación en la sensibilidad (lisado: 44 y 18; Hsp83: 48 y 27%; K39: 48 y 41%) y en los niveles de IgG (&#8804; 6.400; &#8804; 200). El perfil de la infección canina en las localidades con y sin transmisión de la LVH difería sólo en los niveles o en la evolución de IgG, que hace necesaria la temporalidad de las investigaciones, principalmente en zonas tranquilas y aisladas, de baja densidad del vector, donde seria innecesaria la eutanasia en perros. La mejor prueba serologica fue ELISA-K39.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"> <font size="2" face="verdana"><b><a name="topo"></a>ARTIGO ORIGINAL    | ORIGINAL ARTICLE | ART&Iacute;CULO ORIGINAL</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="4" face="verdana"><b>Vigil&acirc;ncia da leishmaniose visceral em   localidades   epidemiologicamente distintas em Juruti, um munic&iacute;pio   miner&aacute;rio do Estado do Par&aacute;, Brasil</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="verdana"><b>Surveillance of visceral leishmaniasis in       epidemiologically distinct locations in Juruti, a mining   municipality in Par&aacute; State, Brazil</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="verdana"><b>Vigilancia de la leishmaniasis visceral en       localidades epidemiol&oacute;gicamente   diferentes en Juruti,   municipio minero del Estado de Par&aacute; (Brasil)</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2"><b><font face="verdana">Lourdes Maria Garcez<sup>I</sup>; Joyce         Favacho Cardoso<sup>II</sup>; Anadeiva Portela Chagas<sup>II</sup>; Jefferson Francisco         Correia Miranda<sup>II</sup>;         Gilberto C&eacute;sar Rodrigues de Souza<sup>II</sup>; Daniela   Cristina Soares<sup>III</sup>; Lucil&acirc;ndia Maria Bezerra<sup>IV</sup>; Habib Fraiha<sup>V</sup>; Jeffrey Jon Shaw<sup>VI</sup>; Hiro Goto<sup>VI</sup></font></b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="verdana"><sup>I</sup>Instituto Evandro Chagas/SVS/MS, Ananindeua,     Par&aacute;, Brasil.Universidade   do Estado do Par&aacute;, Bel&eacute;m, Par&aacute;, Brasil    <br>   <sup>II</sup>Instituto Evandro Chagas/SVS/MS, Ananindeua, Par&aacute;, Brasil    <br>   <sup>III</sup>Instituto Evandro Chagas/SVS/MS, Ananindeua, Par&aacute;, Brasil.Secretaria de Estado de Sa&uacute;de P&uacute;blica do Par&aacute; (SESPA)    <br> <sup>IV</sup>Universidade Federal do Tocantins, Palmas, Tocantins, Brasil    <br> <sup>V</sup>Universidade Federal do Par&aacute;, Bel&eacute;m, Par&aacute;, Brasil    <br> <sup>VI</sup>Universidade de S&atilde;o Paulo, S&atilde;o Paulo, S&atilde;o Paulo, Brasil</font></p>     <p><a href="#endereco"><font size="2" face="verdana">Endere&ccedil;o para correspond&ecirc;ncia    <br> Correspondence    <br> Direcci&oacute;n para correspondencia</font></a></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p> <hr size="1" noshade>     <p><font size="2" face="verdana"><b>RESUMO</b></font></p>     <p><font size="2" face="verdana"> Realizaram-se a&ccedil;&otilde;es de vigil&acirc;ncia    para leishmaniose visceral humana (LVH) em Juruti, munic&iacute;pio miner&aacute;rio    do Estado do Par&aacute;. Foram selecionadas as localidades de Santa Maria (SM),    periurbana, e Capiranga (CA), rural, com e sem LVH, respectivamente, para quatro    inqu&eacute;ritos sorol&oacute;gicos semestrais (ELISA-Lisado) nas popula&ccedil;&otilde;es    caninas (SM = 94; CA = 45) e tr&ecirc;s levantamentos entomol&oacute;gicos (armadilhas    luminosas CDC, 18-6hx4). Posteriormente, investigaram-se status cl&iacute;nico    e infec&ccedil;&atilde;o por <i>Leishmania</i> em 53 c&atilde;es (SM = 28; CA    = 25) com diagn&oacute;stico parasitol&oacute;gico (medula/linfa, Giemsa), molecular    (leuc&oacute;citos do sangue perif&eacute;rico, kDNA-PCR) e sorol&oacute;gico    (ELISA), avaliando-se diferentes ant&iacute;genos (Lisado, k39, Hsp83 - <i>screen    test</i>, curva ROC). Soropreval&ecirc;ncias variaram em SM (45; 40; 15; 15%)    e CA (22; 30; 8,5; 0%), com m&eacute;dias crescentes de IgG em SM (320; 378;    951; 1866; p&lt;0,05), apesar da eutan&aacute;sia de c&atilde;es ap&oacute;s    segundo inqu&eacute;rito; e est&aacute;veis em CA (100; 159, 141; 0), onde n&atilde;o    houve eutan&aacute;sia. A frequ&ecirc;ncia de <i>Lutzomyia longipalpis/Lutzomyia</i>    spp diferiu em SM (279/296) e CA (4/6). Os resultados cl&iacute;nicos e laboratoriais    assemelharam-se para c&atilde;es de SM e CA, respectivamente, quanto &agrave;    infec&ccedil;&atilde;o (parasitol&oacute;gico: 86 e 84%; kDNA-PCR: 100%), <i>status</i>    cl&iacute;nico (assintom&aacute;ticos: 43 e 56%; sintom&aacute;ticos: 57 e 44%)    e especificidade no ELISA (100%), mas variaram sensibilidades (Lisado: 44 e    18%; Hsp83: 48 e 27%; k39: 48 e 41%) e n&iacute;veis de IgG (&#8804; 6.400;    &#8804; 200). O perfil da infec&ccedil;&atilde;o canina nas localidades com    e sem transmiss&atilde;o de LVH diferiu apenas em n&iacute;veis/evolu&ccedil;&atilde;o    de IgG, o que torna necess&aacute;ria a temporalidade dos inqu&eacute;ritos    sobretudo em &aacute;reas silenciosas, isoladas, com baixa densidade do vetor,    onde seria dispens&aacute;vel a eutan&aacute;sia de c&atilde;es. O melhor teste    sorol&oacute;gico foi ELISA-k39.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana"><b>Palavras-chave:</b> Leishmaniose Visceral; C&atilde;es; ELISA; Rea&ccedil;&atilde;o   em Cadeia da Polimerase Leishmania; Insetos Vetores; Vigil&acirc;ncia epidemiol&oacute;gica.</font></p> <hr size="1" noshade>     <p><b><font size="2" face="verdana">ABSTRACT</font></b></p>     <p><font size="2" face="verdana">Surveillance actions for human visceral leishmaniasis    (HVL) were carried out in Juruti, a mining municipality in Par&aacute; State.    A peri-urban (Santa Maria-SM) and a rural (Capiranga-CA) location were selected    with or without HVL, respectively, for the execution of four biannual serologic    inquiries (lysate ELISA) in canine populations (SM = 94, CA = 45) and three    entomological surveys (CDC light traps, 18-6 h x4). Subsequently, the clinical    status, as well as the infection by <i>Leishmania</i>, was investigated in 53    dogs (SM = 28; CA = 25) with parasitological (bone marrow/lymph, Giemsa), molecular    (peripheral blood leukocytes, kDNA-PCR) and serological (ELISA) diagnoses assessing    different antigens (lysate, K39, Hsp83 - screen test, ROC curve). Seroprevalence    varied in SM (45; 40; 15; 15%) and in CA (22; 30; 8.5; 0%), presenting increasing    average IgG rates in SM (320; 378; 951; 1866; p &lt;0.05) despite the euthanasia    of dogs after the second survey, and stable average IgG rates in CA (100; 159;    141; 0), where euthanasia was not conducted. The frequency rates of<i> Lutzomyia    longipalpis/Lutzomyia</i> spp. differed in SM (279/296) and CA (4/6). Clinical    and laboratory results were similar for dogs from SM and CA, respectively: infection    (parasitological examination: 86 and 84%; kDNA-PCR: 100%), clinical status (asymptomatic:    43 and 56%; symptomatic: 57 and 44%), and specificity by ELISA (100%). On the    other hand, sensitivity (lysate: 44 and 18%; Hsp83: 48 and 27%; K39: 48 and    41%) and IgG levels (&#8804; 6,400; &#8804; 200) varied, respectively. The profile    of canine infection in localities with or without HVL transmission differed    only in terms of the level/evolution of IgG, which makes the temporality of    investigations necessary, especially in quiet and isolated areas that present    a low vector density and where the euthanasia of dogs would become unnecessary.    The best serological test was ELISA-K39. </font></p>     <p><font size="2" face="verdana"><b>Keywords:</b> Leishmaniasis, Visceral; Dogs; Enzyme-Linked Immunosorbent Assay; Polymerase Chain Reaction; Insect Vectors; Epidemiologic Surveillance.</font></p> <hr size="1" noshade>     <p><b><font size="2" face="verdana">RESUMEN</font></b></p>     <p><font size="2" face="verdana">Se realizaron actividades de vigilancia para    la leishmaniasis visceral humana (LVH) en Juruti, un municipio minero en el    Estado de Par&aacute;. Se seleccionaron zonas periurbanas (Santa Mar&iacute;a-SM)    y rurales (Capiranga-CA), con y sin LVH respectivamente, para cuatro estudios    serol&oacute;gicos semestrales (ELISA lisado) en la poblaci&oacute;n canina    (SM = 94, CA = 45) y tres encuestas entomol&oacute;gicas (trampas de luz CDC,    18-6hx4). Posteriormente, se investig&oacute; el estado cl&iacute;nico y la    infecci&oacute;n por <i>Leishmania</i> en 53 perros (SM = 28, CA = 25) con diagn&oacute;stico    parasitol&oacute;gico (m&eacute;dula &oacute;sea o linfa, Giemsa), molecular    (leucocitos de sangre perf&eacute;rica, kDNA-PCR) y serol&oacute;gico (ELISA),    evaluando diferentes ant&iacute;genos (Lysate, K39, Hsp83 - screen test, curva    ROC). La seroprevalencia vari&oacute; en SM (45; 40; 15; 15%) y CA (22; 30;    8.5; 0%), con media creciente de IgG en SM (320; 378; 951; 1866; p&lt;0,05),    a pesar de la eutanasia en los perros despu&eacute;s de la segunda encuesta,    y estable CA (100; 159, 141; 0), en que no hubo eutanasia. La frecuencia de    <i>Lutzomyia longipalpis/Lutzomyia </i>spp difiere en SM (279/296) y CA (4/6).    Los resultados cl&iacute;nicos y de laboratorio se asemejan para perros de SM    y AC, respectivamente, respecto a la infecci&oacute;n (par&aacute;sitos: 86    y 84%, kDNA-PCR: 100%), situaci&oacute;n cl&iacute;nica (asintom&aacute;tica:    43, 56%; sintom&aacute;ticas: 57, 44%) y especificidad en ELISA (100%), pero    se registr&oacute; variaci&oacute;n en la sensibilidad (lisado: 44 y 18; Hsp83:    48 y 27%; K39: 48 y 41%) y en los niveles de IgG (&#8804; 6.400; &#8804; 200).    El perfil de la infecci&oacute;n canina en las localidades con y sin transmisi&oacute;n    de la LVH difer&iacute;a s&oacute;lo en los niveles o en la evoluci&oacute;n    de IgG, que hace necesaria la temporalidad de las investigaciones, principalmente    en zonas tranquilas y aisladas, de baja densidad del vector, donde seria innecesaria    la eutanasia en perros. La mejor prueba serologica fue ELISA-K39.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana"><b>Palabras clave:</b> Leishmaniasis Visceral; Perro;     Prueba ELISA; Reacci&oacute;n   en Cadena de la Polimerasa; Insectos Vectores; Vigilancia Epidemiol&oacute;gica. </font></p> <hr size="1" noshade>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="verdana"><b>INTRODU&Ccedil;&Atilde;O</b></font></p>     <p><font size="2" face="verdana"> A leishmaniose visceral humana (LVH) &eacute;    uma doen&ccedil;a grave e potencialmente fatal sem diagn&oacute;stico e tratamento    precoces. No continente americano &eacute; causada pelo protozo&aacute;rio <i>Leishmania    (Leishmania) infantum chagasi</i>, cuja transmiss&atilde;o a hospedeiros vertebrados    &eacute; feita pela esp&eacute;cie <i>Lutzomyia longipalpis</i> (Diptera: Psychodidae:    Phlebotominae), o vetor mais definido da LVH nas Am&eacute;ricas. A raposa (<i>Cerdocyon    thous</i>) atua como reservat&oacute;rio do parasito na manuten&ccedil;&atilde;o    de um ciclo silvestre<sup>14,11</sup>, mas o c&atilde;o dom&eacute;stico (<i>Canis    familiaris</i>) tem import&acirc;ncia epidemiol&oacute;gica na transmiss&atilde;o    aos humanos, por ser o reservat&oacute;rio no ciclo dom&eacute;stico do protozo&aacute;rio    e a principal fonte de infec&ccedil;&atilde;o ao vetor<sup>15</sup>.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">A leishmaniose visceral encontra-se em expans&atilde;o,     com   tend&ecirc;ncia &agrave; urbaniza&ccedil;&atilde;o no Estado do Par&aacute;.   Algumas  &aacute;reas   de transmiss&atilde;o intensa da doen&ccedil;a compreendem munic&iacute;pios   do oeste do Estado. Nesta regi&atilde;o, Juruti &eacute;  classificado como   munic&iacute;pio de transmiss&atilde;o espor&aacute;dica para LVH; entretanto,   tem divisa, a leste, com Santar&eacute;m, segunda maior cidade do   Estado e &aacute;rea de transmiss&atilde;o intensa da doen&ccedil;a. O grande   potencial miner&aacute;rio (bauxita) de Juruti tem atra&iacute;do   empreendimentos que, apesar de contribu&iacute;rem para o   desenvolvimento econ&ocirc;mico da regi&atilde;o, provocam velozes   transforma&ccedil;&otilde;es ambientais, com impactos na sa&uacute;de p&uacute;blica.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">As caracter&iacute;sticas socioecon&ocirc;micas     e ambientais   influenciam a efetividade das estrat&eacute;gias operadas nos   munic&iacute;pios brasileiros para o controle da LVH<sup>20,7</sup>. Por esse   motivo, a compreens&atilde;o da evolu&ccedil;&atilde;o da doen&ccedil;a no   contexto   de grandes transforma&ccedil;&otilde;es, orientaria as a&ccedil;&otilde;es   voltadas &agrave; vigil&acirc;ncia, preven&ccedil;&atilde;o e controle da leishmaniose visceral<sup>20,4</sup>.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">Analisaram-se, em um seguimento de 18 meses,   fatores de risco para LVH (reservat&oacute;rio dom&eacute;stico e vetor) em dois microambientes de Juruti, representados por localidades rurais sentinelas, com e sem transmiss&atilde;o de LVH e sob influ&ecirc;ncia direta e indireta de um empreendimento miner&aacute;rio. Em seguida, investigou-se o perfil de c&atilde;es infectados em cada localidade, com o uso de m&eacute;todos de diagn&oacute;stico cl&iacute;nico e laboratorial (parasitol&oacute;gico, molecular e sorol&oacute;gico). O desempenho de ant&iacute;genos, bruto e recombinantes, no ensaio imunoenzim&aacute;tico (ELISA) para o diagn&oacute;stico sorol&oacute;gico nessas &aacute;reas epidemiologicamente distintas, foi estabelecido. Discutiram-se ainda as implica&ccedil;&otilde;es da eutan&aacute;sia de c&atilde;es nas a&ccedil;&otilde;es de controle.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="verdana"><b>MATERIAIS E M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p><font size="2" face="verdana"><b>&Aacute;REAS DE ESTUDO</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="verdana">A pesquisa sobre leishmaniose visceral canina     (LVC) foi realizada em duas localidades sentinelas, Santa Maria e Capiranga, do Munic&iacute;pio de Juruti/Par&aacute;, distantes do centro urbano, respectivamente, 12 e 60 km (<a href="#f1">Figura 1</a>). Na localidade rural Capiranga, situada no entorno do s&iacute;tio de prospec&ccedil;&atilde;o mineral, n&atilde;o h&aacute; casos de LVH relatados pela comunidade residente e tampouco notificados nos &uacute;ltimos cinco anos investigados. Em Santa Maria, periurbana e classificada como localidade de transmiss&atilde;o da doen&ccedil;a, havia um caso de LV humana notificado h&aacute; tr&ecirc;s anos, conforme informado pela Secretaria de Sa&uacute;de do Munic&iacute;pio de Juruti.</font></p>     <p><a name="f1"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/rpas/v1n1/1a16f1.gif" border="0"></p>     <p>&nbsp;</p> <font size="2" face="verdana"><b>POPULA&Ccedil;&Atilde;O CANINA</b></font>     <p><font size="2" face="verdana">A   popula&ccedil;&atilde;o canina correspondia a 30% da popula&ccedil;&atilde;o   humana, tanto em Santa Maria (94/303) quanto em CA   (45/149) no in&iacute;cio do estudo (11/2006).</font></p>     <p><font size="2" face="verdana"><b>DESENHO DO ESTUDO E AMOSTRA</b></font></p>     <p><font size="2" face="verdana">Dois grupos de amostra foram utilizados nas duas   localidades. O primeiro (G1), para o seguimento da LVC   por meio de inqu&eacute;ritos sorol&oacute;gicos, e o segundo (G2) para   a determina&ccedil;&atilde;o do perfil da LVC e do desempenho   diagn&oacute;stico de diferentes ant&iacute;genos em testes sorol&oacute;gicos.   A   amostra do G1 consistiu apenas de plasmas. Sendo assim,   em um seguimento temporal de 18 meses realizaram-se   quatro inqu&eacute;ritos sorol&oacute;gicos a intervalos semestrais:   novembro/2006, abril/2007, outubro/2007 e abril/2008.   O n&uacute;mero de animais variou a cada inqu&eacute;rito, na   depend&ecirc;ncia do tamanho da popula&ccedil;&atilde;o canina e do   encontro dos c&atilde;es nos arredores das resid&ecirc;ncias. Em Santa   Maria, as amostras do primeiro ao quarto inqu&eacute;rito   somaram 217 plasmas (55, 57, 47 e 58), enquanto em   Capiranga totalizaram 90 (27, 10, 23 e 30). A amostra do   G2 comp&ocirc;s-se de diferentes esp&eacute;cimes: plasma, leuc&oacute;citos   do sangue perif&eacute;rico (LSP) e aspirado medular/linf&aacute;tico de   53 c&atilde;es (Santa Maria: 28 e Capiranga: 25), obtidos dois   meses ap&oacute;s a conclus&atilde;o do seguimento sorol&oacute;gico. Nessa   amostra investigou-se o perfil da LVC nas duas localidades,   considerando crit&eacute;rios cl&iacute;nicos e laboratoriais para   determina&ccedil;&atilde;o de infec&ccedil;&atilde;o e/ou doen&ccedil;a. </font></p>     <p><font size="2" face="verdana"><b>COLETA DE ESP&Eacute;CIMES E EXAMES LABORATORIAIS</b></font></p>     <p><font size="2" face="verdana">O total de 5mL de sangue (para G1 ou G2) foi    coletado de cada animal por pun&ccedil;&atilde;o venocef&aacute;lica em tubo    a v&aacute;cuo contendo EDTA (Shandong, USA). O plasma foi ent&atilde;o obtido    por centrifuga&ccedil;&atilde;o &agrave; temperatura ambiente (3700g/10'/TA)    e mantido a -20<sup>o </sup>C para posterior an&aacute;lise por meio do ensaio    imunoenzim&aacute;tico (ELISA) com uso de ant&iacute;geno bruto de <i>Leishmania,</i>    que consistiu em lisado de promastigotas de <i>L. (L.) infantum chagasi</i><sup>18</sup>.    Para G2 utilizaram-se no ELISA, al&eacute;m do ant&iacute;geno bruto de <i>Leishmania,</i>    ant&iacute;genos recombinantes Hsp83<sup>2</sup> e k39<sup>23</sup> . O desempenho    dos testes sorol&oacute;gicos para o diagn&oacute;stico da LVC com os tr&ecirc;s    ant&iacute;genos foi comparado nas diferentes &aacute;reas em rela&ccedil;&atilde;o    ao padr&atilde;o ouro estabelecido. Para este grupo (G2), tamb&eacute;m obtiveram-se    LSP, que foram preservados a -20<sup>o </sup>C at&eacute; o momento de uso e    destinaram-se ao diagn&oacute;stico pela kDNA-PCR<sup>13</sup> . Amostras de    linfonodo (pr&eacute;-escapular e/ou popl&iacute;teo) ou medula &oacute;ssea    foram tamb&eacute;m obtidas dos mesmos c&atilde;es, por pun&ccedil;&atilde;o    aspirativa, e o material destinou-se ao preparo de esfrega&ccedil;os corados    pelo Giemsa e examinados ao microsc&oacute;pio &oacute;ptico (40x) para a pesquisa    de amastigotas<sup>16</sup>.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="verdana"><b>EXAME CL&Iacute;NICO DOS C&Atilde;ES </b></font></p>     <p><font size="2" face="verdana">Os c&atilde;es do G2 foram examinados quanto    a seis sinais da doen&ccedil;a: alop&eacute;cia, dermatite, ulcera&ccedil;&otilde;es    cut&acirc;neas, conjuntivite, onicogrifose e linfadenopatia. Cada sinal foi    pontuado em uma escala semiquantitativa de 0 (ausente) a 3 (severo), e a soma    revelou o total da pontua&ccedil;&atilde;o cl&iacute;nica. C&atilde;es com pontua&ccedil;&atilde;o    total de 0 a 2 foram arbitrariamente classificados como assintom&aacute;ticos,    de 3 a 6 oligossintom&aacute;ticos e de 7 a 18 polissintom&aacute;ticos<sup>19</sup>.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana"><b>PADR&Atilde;O OURO PARA COMPARA&Ccedil;&Atilde;O DOS TESTES</b> </font></p>     <p><font size="2" face="verdana">Na amostra obtida ap&oacute;s o seguimento,     o exame   parasitol&oacute;gico direto e o ELISA-lisado foram utilizados em   associa&ccedil;&atilde;o para se determinar um painel de amostras   padr&atilde;o ouro. Estabeleceu-se um consenso entre os dois   testes, no qual os plasmas positivos para pelo menos um   deles, e os negativos para ambos, foram considerados os   grupos padr&atilde;o ouro positivo e negativo, respectivamente.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana"><b>ESTAT&Iacute;STICAS </b></font></p>     <p><font size="2" face="verdana">Utilizou-se o teste exato de Fisher e a an&aacute;lise    de vari&acirc;ncia (ANOVA) para compara&ccedil;&atilde;o entre grupos, com n&iacute;vel    de signific&acirc;ncia igual a 5%. Como parte da an&aacute;lise do perfil da    infec&ccedil;&atilde;o/doen&ccedil;a em amostra de c&atilde;es de Santa Maria    (28) e Capiranga (25), os resultados dos testes de ELISA com os tr&ecirc;s ant&iacute;genos    nessa amostra foram comparados &agrave;queles obtidos com o padr&atilde;o ouro    para a determina&ccedil;&atilde;o do desempenho do teste com cada ant&iacute;geno    (ELISA-lisado, ELISA-Hsp83 e ELISA-k39). Assim, utilizou-se o <i>screen test</i>,    onde: a = verdadeiros positivos, b = falsos positivos, c = falsos negativos    e d = verdadeiros negativos. Foram calculados a sensibilidade (a/a+c x 100),    especificidade (d/b+d x 100) e os valores de predi&ccedil;&atilde;o positivo    (a/a+b x 100) e negativo (d/c+d x 100), al&eacute;m da preval&ecirc;ncia (a+c/a+b+c+d).    O contrabalan&ccedil;o entre sensibilidade e especificidade foi expresso na    curva ROC (do ingl&ecirc;s,<i> receiver operator caracteristic</i>) para defini&ccedil;&atilde;o    do teste com melhor poder discriminat&oacute;rio em cada localidade<sup>8</sup>.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana"><b>LEVANTAMENTOS ENTOMOL&Oacute;GICOS</b></font></p>     <p><font size="2" face="verdana">Realizaram-se tr&ecirc;s levantamentos entomol&oacute;gicos com   armadilhas luminosas CDC em per&iacute;odos do ver&atilde;o (abril e   julho/2007) e do inverno amaz&ocirc;nicos (janeiro/2008).   Cinco esta&ccedil;&otilde;es de coleta entomol&oacute;gica foram utilizadas   por localidade e cada captura teve a dura&ccedil;&atilde;o de quatro   noites (18 - 6 h x 4), perfazendo um esfor&ccedil;o de captura   igual a 144 h em cada localidade. As armadilhas   luminosas (CDC) foram estabelecidas em pares dentro das   casas e fora delas, &agrave;s proximidades de anexos abrigando   animais em um raio inferior a 20 m. A identifica&ccedil;&atilde;o dos flebotom&iacute;neos   foi feita pelo m&eacute;todo morfol&oacute;gico<sup>22</sup>.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="verdana"><b>RESULTADOS</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="verdana">Os resultados obtidos por meio da vigil&acirc;ncia     do   reservat&oacute;rio canino (<i>Canis familiaris</i>) e do vetor   flebotom&iacute;neo (<i>Luzomyia longipalpis</i>) em Santa Maria e   Capiranga revelaram fatores de risco para leishmaniose visceral humana em ambas as localidades.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">O seguimento de c&atilde;es das popula&ccedil;&otilde;es     de Santa Maria   e Capiranga durante 18 meses, por meio de inqu&eacute;ritos   sorol&oacute;gicos, revelou frequ&ecirc;ncias de soropositividade para   LVC (ELISA-Lisado) mais altas em Santa Maria do que em   Capiranga, especialmente nos dois primeiros pontos de   coleta (<a href="#f2">Figura 2A</a>). Os n&iacute;veis de anticorpos IgG tamb&eacute;m   foram elevados para os c&atilde;es de Santa Maria (&#8804; 6400), com   n&iacute;tida ascens&atilde;o de sua m&eacute;dia geom&eacute;trica ao longo   do   tempo (320, 378, 951, 1866; p&lt;0,05). Nos animais de   Capiranga detectaram-se baixos n&iacute;veis de IgG (&#8804; 200),   sem altera&ccedil;&otilde;es significantes durante todo o seguimento   (100, 159, 141, 0; p&gt;0,05), como mostra a <a href="#f2">figura 2B</a>.</font></p>     <p><a name="f2"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/rpas/v1n1/1a16f2.gif" border="0"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="verdana">As capturas entomol&oacute;gicas simult&acirc;neas    ao seguimento dos c&atilde;es, duas no ver&atilde;o e uma no inverno amaz&ocirc;nicos,    revelaram a presen&ccedil;a de flebotom&iacute;neos sinantr&oacute;picos nas    duas localidades, com predomin&acirc;ncia de <i>Lutzomyia longipalpis</i> em    rela&ccedil;&atilde;o a <i>Lutzomyia </i>spp. A frequ&ecirc;ncia daquela esp&eacute;cie    na amostra foi maior em Santa Maria (279/296) que em Capiranga (4/6), com densidade    mais elevada no peridomic&iacute;lio. No intradomic&iacute;lio a esp&eacute;cie    foi capturada em baixa frequ&ecirc;ncia nas duas localidades (Santa Maria: 3/279    e Capiranga: 2/4). A <a href="#t1">tabela 1</a> apresenta as oito esp&eacute;cies    identificadas e suas respectivas frequ&ecirc;ncias na amostra. Nenhum esp&eacute;cime    apresentou infec&ccedil;&atilde;o natural por <i>Leishmania</i>.</font></p>     <p><a name="t1"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/rpas/v1n1/1a16t1.gif" border="0"></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="verdana">A abordagem transversal para compara&ccedil;&atilde;o    do perfil da infec&ccedil;&atilde;o/doen&ccedil;a indicou semelhan&ccedil;as    entre os c&atilde;es de Santa Maria (28) e Capiranga (25). A maioria, aproximadamente    80%, tinha idade igual ou inferior a quatro anos, nas duas localidades (<a href="#t2">Tabela    2</a>). Tamb&eacute;m n&atilde;o diferiu, entre as localidades, o n&uacute;mero    de animais nas diferentes categorias cl&iacute;nicas: assintom&aacute;ticos    (SM = 12 e CA = 14), oligossintom&aacute;ticos (SM = 11 e CA = 9) e polissintom&aacute;ticos    (SM = 5 e CA = 2), sendo o percentual de assintom&aacute;ticos (SM = 43% e CA    = 56%) e de sintom&aacute;ticos (SM = 57% e CA = 44%) semelhantes em ambas.    A frequ&ecirc;ncia de infec&ccedil;&atilde;o confirmada parasitologicamente    foi igualmente alta em Santa Maria (86%) e Capiranga (84%) e atingiu 100% quando    usado o kDNA-PCR (<a href="#f3">Figura 3</a>). A amplifica&ccedil;&atilde;o    espec&iacute;fica do DNA (145 pares de bases) confirmou tratar-se de infec&ccedil;&atilde;o    por<i> L. (</i>L.<i>) infantum chagasi </i>(<a href="#f4">Figura 4</a>).</font></p>     <p><a name="t2"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/rpas/v1n1/1a16t2.gif" border="0"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><a name="f3"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/rpas/v1n1/1a16f3.gif" border="0"></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><a name="f4"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/rpas/v1n1/1a16f4.gif" border="0"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="verdana">As diferen&ccedil;as entre o perfil de infec&ccedil;&atilde;o/doen&ccedil;a   para os   c&atilde;es de Santa Maria e Capiranga foram apenas observadas   na resposta humoral de anticorpos IgG &agrave; infec&ccedil;&atilde;o por   Leishmania. A frequ&ecirc;ncia de c&atilde;es sororreagentes diferiu nas   duas &aacute;reas, na depend&ecirc;ncia do ant&iacute;geno utilizado para o   ELISA (<a href="#f3">Figura 3</a>). O k39 foi mais sens&iacute;vel que o lisado e o   Hsp83 na detec&ccedil;&atilde;o de c&atilde;es infectados assintom&aacute;ticos,   sendo o &uacute;nico a revelar semelhan&ccedil;a entre as frequ&ecirc;ncias   de   soropositivos assintom&aacute;ticos das duas localidades, haja   vista os demais se mostrarem sens&iacute;veis para c&atilde;es infectados   assintom&aacute;ticos somente em Santa Maria (<a href="#f5">Figura 5A</a> e <a href="#f5">5C</a>).   Os n&iacute;veis de IgG em c&atilde;es, &agrave; semelhan&ccedil;a do observado   nos inqu&eacute;ritos sorol&oacute;gicos realizados durante o seguimento,   foram mais elevados em animais de Santa Maria do que   naqueles de Capiranga, sobretudo quando utilizado o   ELISA-Lisado (<a href="#f5">Figura 5B</a> e <a href="#f5">5D</a>).</font></p>     <p><a name="f5"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/rpas/v1n1/1a16f5.gif" border="0"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="verdana">A <a href="#t3">tabela 3</a> apresenta o desempenho    dos testes de diagn&oacute;stico em rela&ccedil;&atilde;o ao padr&atilde;o ouro,    destacando a superior sensibilidade do exame parasitol&oacute;gico para detec&ccedil;&atilde;o    de infec&ccedil;&atilde;o por <i>Leishmania </i>e as varia&ccedil;&otilde;es    em preval&ecirc;ncia determinadas pelo m&eacute;todo de diagn&oacute;stico utilizado.    Entre os testes sorol&oacute;gicos, o ELISA-k39 foi o que apresentou maior poder    discriminat&oacute;rio no sorodiagn&oacute;stico da LVC em ambas as localidades    (<a href="#f6">Figura 6</a>).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><a name="t3"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/rpas/v1n1/1a16t3.gif" border="0"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><a name="f6"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/rpas/v1n1/1a16f6.gif" border="0"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="verdana"><b>DISCUSS&Atilde;O</b></font></p>     <p><font size="2" face="verdana">O grande potencial miner&aacute;rio de Juruti,    no oeste do Estado do Par&aacute;, tem atra&iacute;do empreendimentos que, a    despeito de contribu&iacute;rem com o desenvolvimento econ&ocirc;mico da regi&atilde;o,    provocam r&aacute;pidas transforma&ccedil;&otilde;es ambientais capazes de influenciar    a epidemiologia da leishmaniose visceral e produzir impactos na sa&uacute;de    p&uacute;blica<sup>20,7</sup>. O fortalecimento das a&ccedil;&otilde;es de vigil&acirc;ncia,    incluindo a investiga&ccedil;&atilde;o detalhada dos fatores de risco, deve    propiciar o conhecimento necess&aacute;rio para a elabora&ccedil;&atilde;o das    estrat&eacute;gias de controle a serem operadas pelo Munic&iacute;pio.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="verdana">Neste estudo, executaram-se a&ccedil;&otilde;es de vigil&acirc;ncia   para   leishmaniose visceral (LV) ao longo de 18 meses, durante   fase de prospec&ccedil;&atilde;o da bauxita em Juruti. As a&ccedil;&otilde;es   foram   centradas no reservat&oacute;rio canino e no vetor. Utilizaram-se   espa&ccedil;os rurais epidemiologicamente distintos e   denominados localidades sentinelas: Santa Maria, com   transmiss&atilde;o de LVH e exposta a influ&ecirc;ncias urbanas pela   sua localiza&ccedil;&atilde;o perif&eacute;rica &agrave; sede municipal, da   qual dista   apenas 12 km, e Capiranga, a 60 km da &aacute;rea urbana,   onde n&atilde;o h&aacute; registros de LVH. Esta segunda localidade,   entretanto, situa-se no entorno da mina de bauxita, onde   est&atilde;o em curso atividades relacionadas &agrave; extra&ccedil;&atilde;o   do   min&eacute;rio.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">Inicialmente, foram investigadas as varia&ccedil;&otilde;es   temporais   da frequ&ecirc;ncia de infec&ccedil;&atilde;o determinada pela sorologia   (ELISA) na popula&ccedil;&atilde;o canina das localidade em estudo. Em   seguida, buscou-se estabelecer o perfil da infec&ccedil;&atilde;o/doen&ccedil;a   nos c&atilde;es em cada localidade, a fim de obter subs&iacute;dios &agrave;   discuss&atilde;o do potencial das a&ccedil;&otilde;es de controle, tendo como   alvo o reservat&oacute;rio c&atilde;o.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">Ao se determinar a preval&ecirc;ncia de c&atilde;es     sororreagentes   para leishmaniose visceral no in&iacute;cio do seguimento,   sobretudo no segundo inqu&eacute;rito semestral, ambas as   localidades pareciam expostas ao mesmo risco (<a href="#f2">Figura 2A</a>).   Com base nesses resultados e na ocorr&ecirc;ncia de um novo   caso de LVH em Santa Maria durante a pesquisa, a equipe   de vigil&acirc;ncia do Munic&iacute;pio decidiu pela eutan&aacute;sia dos c&atilde;es   sororreagentes, o que foi parcialmente realizado apenas   em Santa Maria. Os terceiro e quarto inqu&eacute;ritos   sorol&oacute;gicos caninos revelaram crescentes n&iacute;veis de IgG nos   c&atilde;es de Santa Maria, mesmo na vig&ecirc;ncia da interven&ccedil;&atilde;o,   mas em Capiranga, onde n&atilde;o houve eutan&aacute;sia de c&atilde;es e   tampouco casos de LVH, os n&iacute;veis de IgG mantiveram-se   baixos ou indetect&aacute;veis durante os 18 meses de seguimento   (<a href="#f2">Figura 2B</a>).</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">Em &aacute;reas de transmiss&atilde;o intensa,    os n&iacute;veis de anticorpos IgG anti-<i>Leishmania</i> em c&atilde;es s&atilde;o    elevados ou est&atilde;o em ascens&atilde;o<sup>19</sup>, e se relacionam &agrave;    parasitemia<sup>7,21</sup>, o que estaria ocorrendo com os c&atilde;es de Santa    Maria. Os baixos n&iacute;veis de IgG, por sua vez, semelhantes &agrave;queles    descritos para a popula&ccedil;&atilde;o canina de Capiranga, sugerem controle    da infec&ccedil;&atilde;o canina (neste caso, Capiranga seria uma localidade    silenciosa) ou s&atilde;o consequ&ecirc;ncia de rea&ccedil;&otilde;es inespec&iacute;ficas    na sorologia, pass&iacute;veis de ocorrer devido &agrave; alta sensibilidade    do ELISA, pois os c&atilde;es est&atilde;o expostos a diversas outras doen&ccedil;as    infecciosas<sup>9,3,10</sup> que induzem linf&oacute;citos B &agrave; produ&ccedil;&atilde;o    de IgG com eventual rea&ccedil;&atilde;o cruzada com ant&iacute;genos de <i>L.    (L.) infantum chagasi</i><sup>1</sup>.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">Diferen&ccedil;as entre as popula&ccedil;&otilde;es     caninas das duas   localidades n&atilde;o teriam sido reveladas se considerada   apenas a frequ&ecirc;ncia de c&atilde;es sororreagentes constatada,   por exemplo, no segundo inqu&eacute;rito sorol&oacute;gico (Santa   Maria: 40% e Capiranga: 30%, como mostra a <a href="#f2">figura 2A</a>).   A&ccedil;&otilde;es de vigil&acirc;ncia da leishmaniose visceral focadas no   reservat&oacute;rio canino, portanto, devem considerar a   necess&aacute;ria temporalidade dos inqu&eacute;ritos sorol&oacute;gicos e   a   investiga&ccedil;&atilde;o dos n&iacute;veis de IgG, especialmente quando   levantamentos entomol&oacute;gicos n&atilde;o s&atilde;o fact&iacute;veis pela   car&ecirc;ncia de suporte t&eacute;cnico local.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">Os intrigantes baixos n&iacute;veis de IgG em    c&atilde;es de Capiranga, com aus&ecirc;ncia total de reatividade no &uacute;ltimo    inqu&eacute;rito (<a href="#f2">Figura 2B</a>), suscitaram uma investiga&ccedil;&atilde;o    do perfil da infec&ccedil;&atilde;o/doen&ccedil;a canina em amostras das duas    localidades, a fim de se compararem os resultados. C&atilde;es de Santa Maria    e de Capiranga, com idades semelhantes (<a href="#t2">Tabela 2</a>), revelaram-se    id&ecirc;nticos quanto &agrave; apresenta&ccedil;&atilde;o cl&iacute;nica da    leishmaniose visceral, considerando a intensidade de sinais e o n&uacute;mero    de animais distribu&iacute;dos nas categorias assintom&aacute;ticos, oligossintom&aacute;ticos    e polissintom&aacute;ticos. A frequ&ecirc;ncia de infec&ccedil;&atilde;o confirmada    parasitologicamente foi igualmente alta em Santa Maria (86%) e Capiranga (84%)    e, com o uso da kDNA-PCR (<a href="#f3">Figuras 3</a> e <a href="#f4">4</a>),    alcan&ccedil;ou 100% em c&atilde;es de ambas as localidades, indicando que a    enzootia atinge toda a popula&ccedil;&atilde;o canina nas duas &aacute;reas.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">A ocorr&ecirc;ncia da LV humana em uma determinada &aacute;rea   depende, basicamente, da presen&ccedil;a de dois fatores, o   11 vetor infectado e o hospedeiro humano suscet&iacute;vel . Mesmo   existindo o c&atilde;o infectado (reservat&oacute;rio dom&eacute;stico) nas   duas   localidades em igual propor&ccedil;&atilde;o, a alta frequ&ecirc;ncia de   <i>Lutzomyia longipalpis</i> em Santa Maria, mas n&atilde;o em   Capiranga (<a href="#t1">Tabela 1</a>), diferenciou as duas localidades   quanto ao risco de transmiss&atilde;o da leishmaniose visceral   aos humanos. O h&aacute;bito de se fazer fogueiras noturnas em   Capiranga, incorporado da cultura ind&iacute;gena local,   certamente contribui para inibir a presen&ccedil;a de   flebotom&iacute;neos no peridomic&iacute;lio e a consequente   transmiss&atilde;o de <i>L. (L.) infantum chagasi</i> aos humanos. Esta   hip&oacute;tese merece ser investigada com um estudo sobre   conhecimentos, atitudes e pr&aacute;ticas (CAP) dos habitantes   dessas localidades em rela&ccedil;&atilde;o &agrave; leishmaniose visceral   e   sua preven&ccedil;&atilde;o.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">Embora o exame parasitol&oacute;gico garanta a confirma&ccedil;&atilde;o   absoluta da infec&ccedil;&atilde;o, na pr&aacute;tica &eacute; necess&aacute;rio   trabalhar   com testes que n&atilde;o s&atilde;o altamente sens&iacute;veis e espec&iacute;ficos.   Na mesma amostra, o ELISA revelou frequ&ecirc;ncia de positivos   muito inferior ao real n&uacute;mero de c&atilde;es infectados, e com varia&ccedil;&otilde;es   de sensibilidade em fun&ccedil;&atilde;o do ant&iacute;geno utilizado   (<a href="#f3">Figura 3</a>). Embora o lisado bruto de promastigotas de <i>L.   (L.) infantum chagasi</i> tenha se apresentado mais sens&iacute;vel   para detectar altos n&iacute;veis de IgG em c&atilde;es sintom&aacute;ticos   (Figura 5D), para animais infectados assintom&aacute;ticos n&atilde;o   teve o mesmo desempenho nas duas &aacute;reas. Os dois   ant&iacute;genos recombinantes (Hsp83 e k39) foram os mais   sens&iacute;veis nessas circunst&acirc;ncias, mas o ELISA-k39 foi o que   apresentou maior poder discriminat&oacute;rio (<a href="#f6">Figura 6</a>),   detectando c&atilde;es infectados assintom&aacute;ticos tanto em Santa   Maria quanto em Capiranga (<a href="#f5">Figura 5A</a> e <a href="#f5">C</a>).</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">Para este tipo de an&aacute;lise &eacute; desej&aacute;vel utilizar c&atilde;es   semelhantes aos que receber&atilde;o aplica&ccedil;&atilde;o de teste   sorol&oacute;gico na pr&aacute;tica de vigil&acirc;ncia, bem como &eacute;   importante que a escolha do teste padr&atilde;o ouro, inexistente no caso da   LVC, seja adequada<sup>8</sup>. Foi necess&aacute;rio, ent&atilde;o,   estabelecer um padr&atilde;o ouro para efeito de c&aacute;lculo dos   &iacute;ndices de desempenho dos diferentes ant&iacute;genos, que   consistiu na associa&ccedil;&atilde;o dos dois exames mais tradicionais,   o parasitol&oacute;gico e o ELISA-lisado. Este fato e, sobretudo, a   inusitada natureza da amostra em CA (84% dos c&atilde;es   infectados), influenciaram a estimativa de especificidade e   demais &iacute;ndices relacionados, como o valor de predi&ccedil;&atilde;o   negativo, extremamente baixo em fun&ccedil;&atilde;o do pequeno   n&uacute;mero de padr&otilde;es negativos (<a href="#t3">Tabela 3</a>). Esses &iacute;ndices   precisam ainda ser investigados em c&atilde;es provenientes de   localidades com baixa frequ&ecirc;ncia de infec&ccedil;&atilde;o por <i>L.   (L.) infantum chagasi</i>, pois apesar do ELISA ser o m&eacute;todo de escolha para   pesquisas epidemiol&oacute;gicas<sup>11</sup>, &eacute; importante   considerar varia&ccedil;&otilde;es de performance associadas &agrave; carga   de doen&ccedil;a (ou intensidade de transmiss&atilde;o) em   determinada localidade. A sensibilidade e especificidade   do ELISA s&atilde;o tamb&eacute;m significativamente reduzidas no per&iacute;odo   latente da infec&ccedil;&atilde;o canina<sup>7</sup>. Sendo assim, sob   diferentes condi&ccedil;&otilde;es (ou em popula&ccedil;&otilde;es caninas   distintas),   sua sensibilidade poderia se apresentar ainda mais baixa do que a descrita neste estudo.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">A inexist&ecirc;ncia de registros oficiais nos &uacute;ltimos   cinco   anos, ou de relatos dos moradores, da ocorr&ecirc;ncia de LVH em Capiranga   (onde n&atilde;o se realizou a eutan&aacute;sia   de c&atilde;es), associada aos fatores de risco descritos nesse   estudo, confirma a necessidade da vigil&acirc;ncia da LV dirigida   &agrave;s demais localidades no entorno da mina de bauxita e   fundamentada nas caracter&iacute;sticas epidemiol&oacute;gicas locais,   para o alcance da efetividade.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="verdana">Em Capiranga, a vigil&acirc;ncia entomol&oacute;gica &eacute;   preferencial &agrave; eutan&aacute;sia de c&atilde;es, pois, nas condi&ccedil;&otilde;es   ali   existentes, o potencial destes de infectar fleb&oacute;tomos, com   subsequente transmiss&atilde;o aos humanos, &eacute; limitado. Os   achados em Santa Maria, contudo, indicam iminente risco   de urbaniza&ccedil;&atilde;o da LV e medidas rigorosas devem ser   operadas de imediato para evitar sua expans&atilde;o, incluindo   a&ccedil;&otilde;es de educa&ccedil;&atilde;o ambiental, monitoramento de vetores   vislumbrando o controle qu&iacute;mico, eutan&aacute;sia de c&atilde;es   polissintom&aacute;ticos e a busca de novos focos nas   redondezas, em localidades rurais e urbanas.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">Algumas a&ccedil;&otilde;es que podem ser desenvolvidas     para o   controle qu&iacute;mico da popula&ccedil;&atilde;o de vetores s&atilde;o a   borrifa&ccedil;&atilde;o de resid&ecirc;ncias com inseticidas e o uso de coleiras   para c&atilde;es ou de mosquiteiros para humanos,   ambos impregnados com deltamentrina<sup>5</sup>. Recentemente, em um estudo in&eacute;dito   na Am&eacute;rica Latina, demonstrou-se   que o banho de c&atilde;es com esse piretr&oacute;ide tem efeito   residual (efic&aacute;cia entomol&oacute;gica) de 5,2 meses, semelhante   ao observado com o uso das coleiras, com a vantagem do   baixo custo (US$0.06-0.10) em compara&ccedil;&atilde;o a estas   (US$10-15)<sup>6</sup>.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">A despeito das interven&ccedil;&otilde;es poss&iacute;veis, j&aacute; dispon&iacute;veis   ou em experimenta&ccedil;&atilde;o, qualquer a&ccedil;&atilde;o de controle qu&iacute;mico   do vetor depende de estudos entomol&oacute;gicos pr&eacute;vios<sup>16</sup> que   os munic&iacute;pios amaz&ocirc;nicos comumente n&atilde;o conseguem   executar. Em contrapartida, o controle efetivo da LV por   meio da elimina&ccedil;&atilde;o de c&atilde;es exige que uma grande   propor&ccedil;&atilde;o de c&atilde;es infectados, e infectantes ao vetor,   seja removida da localidade<sup>7</sup>, o que geralmente n&atilde;o &eacute; fact&iacute;vel,   sobretudo quando toda a popula&ccedil;&atilde;o canina se encontra   infectada, como demonstrado neste estudo.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">A melhor maneira de controlar a LVC e,   consequentemente, prevenir a doen&ccedil;a humana, seria uma   vacina efetiva para c&atilde;es, o que ainda n&atilde;o est&aacute; dispon&iacute;vel.   As pesquisas associadas ao tema indicam promissores compostos candidatos<sup>17</sup>,   e os avan&ccedil;os na compreens&atilde;o   dos mecanismos pelos quais parasitos do g&ecirc;nero   <i>Leishmania</i> infectam e se evadem da resposta imune de   hospedeiros mam&iacute;feros est&atilde;o abrindo frentes de pesquisa em busca   de novas vacinas contra a doen&ccedil;a<sup>12</sup>.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">Na indisponibilidade de uma vacina para c&atilde;es,     ainda   que o m&eacute;todo de diagn&oacute;stico ideal para a detec&ccedil;&atilde;o   de   infec&ccedil;&atilde;o canina seja encontrado, ele n&atilde;o ser&aacute; efetivo   sem   a solu&ccedil;&atilde;o dos problemas locais enfrentados pela maioria   dos munic&iacute;pios amaz&ocirc;nicos, como as defici&ecirc;ncias em   gest&atilde;o, a escassez de recursos humanos e financeiros e os frequentes   conflitos entre autoridades sanit&aacute;rias e a   popula&ccedil;&atilde;o local, relacionados &agrave; pr&aacute;tica da eutan&aacute;sia   de   c&atilde;es nos moldes atuais.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana">Os resultados deste estudo revelam a ocorr&ecirc;ncia     e a   extens&atilde;o da enzootia de LVC em Capiranga e,   consequentemente, a possibilidade de emerg&ecirc;ncia da LVH   n&atilde;o apenas nesta localidade, mas tamb&eacute;m em outras   silenciosas (similares a Capiranga) e expostas ao impacto   direto de grandes transforma&ccedil;&otilde;es ambientais relacionadas  &agrave;s atividades miner&aacute;rias. Demonstrou-se ainda o risco da   expans&atilde;o do n&uacute;mero de casos de LVH em &aacute;reas de   transmiss&atilde;o expostas a crescentes influ&ecirc;ncias urbanas   (Santa Maria e similares). Os resultados orientam a&ccedil;&otilde;es de   vigil&acirc;ncia, preven&ccedil;&atilde;o e controle da LVH em Juruti, nas   localidades rurais, no entorno da mina e naquelas   periurbanas.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="verdana"><b>AGRADECIMENTOS</b></font></p>     <p><font size="2" face="verdana">&Agrave;s comunidades Santa Maria e Capiranga,     pela sempre calorosa recep&ccedil;&atilde;o e ades&atilde;o &agrave; pesquisa. &Agrave; dra.   Ana M&aacute;rcia   Souza da Cunha Oliveira e demais profissionais da   Secretaria Municipal de Sa&uacute;de de Juruti, pelo apoio e   participa&ccedil;&atilde;o. &Agrave;s equipes t&eacute;cnicas do Instituto   Evandro   Chagas, sobretudo aquelas dos Laborat&oacute;rios de   Imunologia e Epidemiologia (Se&ccedil;&atilde;o de Parasitologia) e de   Geoprocessamento. &Agrave;s t&eacute;cnicas Ros&acirc;ngela Barros e Rita   F&eacute;lix, aos estudantes Eduardo Mota e Lu&iacute;s Dickson e ao dr.   Nelson Veiga, pelo inestim&aacute;vel apoio t&eacute;cnico. &Agrave; dra. Nazar&eacute;  Souza,   da Universidade Federal Rural da Amaz&ocirc;nia. &Agrave;   mineradora Alcoa Alum&iacute;nio S/A, &agrave; Secretaria de Ci&ecirc;ncia,   Tecnologia e Insumos Estrat&eacute;gicos (DECIT/SCTIE) e ao   Conselho Nacional de Desenvolvimento Cient&iacute;fico e Tecnol&oacute;gico   (CNPq) pelo suporte financeiro.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3" face="verdana"><b>REFER&Ecirc;NCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="verdana"> 1 Alves WA, Bevilacqua PD. Quality of diagnosis      of canine visceral leishmaniasis in epidemiological surveys: an epidemic     in  Belo Horizonte, Minas Gerais, Brazil, 1993-1997. Cad Saude Publica. 2004     Jan-Feb;20(1):259-65.<span style='font-size:10.0pt; font-family:Verdana'><font size="2" face="verdana">&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;    &nbsp;&#91; <a href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15029328?itool=EntrezSystem2.PEntrez.Pubmed.Pubmed_ResultsPanel.Pubmed_RVDocSum&ordinalpos=11" target="_blank">Links</a>    &#93;</font></span></font><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana"> 2 Celeste BJ, Angel SO, Castro LG, Gidlund M, Goto H.     <i>Leishmania infantum</i> heat shock protein 83 for the   serodiagnosis of tegumentary leishmaniasis. Braz J   Med Biol Res. 2004 Nov;37(11):1591-3.</font><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana"> 3 Colpo CB, Monteiro SG, Stainki DR, Colpo ETB,   Henriques GB. Natural infection by <i>Trypanosoma cruzi</i>  in dogs. Cienc Rural. 2005 May-Jun;35(3):717-19.</font><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana"> 4 Costa CHN, Vieira JBF. Mudan&ccedil;as no    controle da leishmaniose visceral no Brasil. Rev Soc Bras Med Trop. 2001 mar-abr;34(2):223-228.<span style='font-size:10.0pt; font-family:Verdana'><font size="2" face="verdana"> DOI: 10.1590/S0037-86822001000200013&nbsp;    &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;&#91; <a href="http://www.scielo.br/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0037-86822001000200013&lng=pt&nrm=iso&tlng=pt" target="_blank">Links</a>    &#93;</font></span></font><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana"> 5 Courtenay O, Gillingwater K, Gomes PAF, Garcez    LM, Davies CR. Deltamethrin-impregnated bednets reduce human landing rates of    sandfly vector <i>Lutzomyia longipalpis</i> in Amazon households. Med Vet Entomol.    2007 Jun;21(2):168-76. DOI: 10.1111/j.1365-2915.2007.00678<span style='font-size:10.0pt; font-family:Verdana'><font size="2" face="verdana">&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;    &nbsp;&#91; <a href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17550436?itool=EntrezSystem2.PEntrez.Pubmed.Pubmed_ResultsPanel.Pubmed_RVDocSum&ordinalpos=1" target="_blank">Links</a>    &#93;</font></span></font><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana"> 6 Courtenay O, Kovacic V, Gomes PA, Garcez LM,    Quinnell RJ. A long-lasting topical deltamethrin treatment to protect dogs against    visceral leishmaniasis. 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Epidemiologia cl&iacute;nica: elementos essenciais. Porto Alegre: Artmed; 2006. 288 p.</font><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana"> 9 Garcez LM, Souza NF, Mota EF, Dickson LAJ,    Abreu WU, Cavalcanti VF, et al. Focos de dirofilariose canina na Ilha do Maraj&oacute;:    um fator de risco para a sa&uacute;de humana. Rev Soc Bras Med Trop. 2006 jul-ago;39(4):333-6.<span style='font-size:10.0pt; font-family:Verdana'><font size="2" face="verdana">&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;    &nbsp;&#91; <a href="http://www.scielo.br/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0037-86822006000400003&lng=en&nrm=iso&tlng=en" target="_blank">Links</a>    &#93;</font></span></font><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana"> 10 Glaser B, Gothe R. Imported arthropod-borne    parasites and parasitic arthropods in dogs. Species spectrum and epidemiologic    analysis of the cases diagnosed in 1995/96. 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Epidemiol Serv Sa&uacute;de. 2008 abr-jun;17(2):87-96.<span style='font-size:10.0pt; font-family:Verdana'><font size="2" face="verdana">&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;    &nbsp;&#91; <a href="http://scielo.iec.pa.gov.br/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1679-49742008000200002&lng=pt&nrm=iso" target="_blank">Links</a>    &#93;</font></span></font><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana"> 21 Xiong G, Jin C, Cheng X, Su Z. Deltamethrin bath of   domestic dog in the prevention of sandfly bite. End Dis   Bull. 1994;9:32-34.</font><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana"> 22 Yong DG, Duncan MA. Guide to the identification     and geographic distribution of <i>Lutzomyia sandflies</i> in   Mexico, the West Indies, Central and South America   (Diptera: Psychodidae). 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<body><![CDATA[<br>   Rodovia BR 316, km 7, s/n<sup>o</sup>, Bairro: Levil&acirc;ndia    <br>   CEP: 67030-000 Ananindeua-Par&aacute;-Brasil    <br>   E-mail: <a href="mailto:lourdesgarcez@iec.pa.gov.br">lourdesgarcez@iec.pa.gov.br</a></font></p>     <p><font size="2" face="verdana">Recebido em/Received/Recibido en: 31/7/2009    <br>   </font><font size="2" face="verdana">Aceito em/Accepted/Aceito en: 21/9/2009</font>  </p> 	<script type="text/javascript"> var gaJsHost = (("https:" == document.location.protocol) ? "https://ssl." : "http://www."); document.write(unescape("%3Cscript src='" + gaJsHost + "google-analytics.com/ga.js' type='text/javascript'%3E%3C/script%3E")); </script> <script type="text/javascript"> try { var pageTracker = _gat._getTracker("UA-7885746-4"); pageTracker._setDomainName("none"); pageTracker._setAllowLinker(true); pageTracker._trackPageview(); } catch(err) {}</script> 	     ]]></body><back>
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